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产品选择指南

技术服务信息

当前位置:首页 > 技术资料 > 相关问答 > Clontech > NGS相关制品问答 > ThruPLEX® DNA-Seq Kit
Q-1:ThruPLEX DNA-Seq Kit与其他公司的文库制备试剂盒有何不同?
A-1:

ThruPLEX DNA-Seq Kit是更快速和灵敏度更高的文库制备试剂盒。整个操作包含end-repair,ligation,amplification 3步反应,且在单管中进行反应。
· Input DNA量:50 pg~50 ng
· 纯化步骤:中间不需要(仅文库扩增后)
· 文库制备步骤数:3
· 文库制备的时间:2h
· sample转管次数:0

Q-2:ThruPLEX DNA-Seq Kit对于GC Rich的区域也能实现均一覆盖吗?
A-2:

可以。ThruPLEX DNA-Seq Kit对于GC Rich的区域也能实现均一覆盖。

Q-3:ThruPLEX DNA-Seq Kit是否可以用于变性/单链DNA?
A-3:

不可以。ThruPLEX DNA-Seq Kit必须使用双链DNA。

Q-4:DNA是否需要片段化?
A-4:

需要。DNA长度>1 kb时,使用ThruPLEX DNA-Seq Kit前需进行片段化。

Q-5:DNA片段化可以使用哪些方法?
A-5:

DNA片段化可以使用物理方法(Covaris、Bioruptor等)或酶切方法(DNA Fragmentation Kit等)的方法。

Q-6:使用Covaris进行片段化时,DNA的加量是多少?另外,片段化使用的缓冲液种类有哪些?
A-6:

在50-130 μl 的TE 或Low-TE缓冲液中加入2-50 ng DNA即可成功完成片段化过程。使用更少量DNA时,可以参考“Low-volume DNA shearing for ThruPLEX library prep”。

Q-7:使用Covaris进行片段化时,如何设置反应条件?
A-7:

Covaris的推荐条件需要根据所需片段大小进行设定。详细请参考Covaris网页内容。

Q-8:是否有将ThruPLEX DNA-Seq Kit中使用的gDNA片段化的试剂盒?
A-8:

可以使用将gDNA随机片段化的DNA Fragmentation Kit(Code No. 6137)。使用方法请参考DNA Fragmentation Kit的说明书。

Q-9:推荐用于ThruPLEX DNA-Seq Kit的DNA起始量是多少?
A-9:

ThruPLEX DNA-Seq Kit设计用于以50 pg~50 ng DNA起始的扩增。 起始量取决于所需的多样性水平和用途。

Q-10:必须使用Indexing kit吗?Multiplex分析时使用哪些index比较好?
A-10:

是的。需要另购Indexing kit。Indexing kit以tube或microplate方式提供,含有对应Illumina公司NGS用index序列形成的扩增引物,用于ThruPLEX DNA-Seq文库扩增。

Q-11:推荐使用哪些方法确定文库扩增反应所需的适宜PCR循环数?
A-11:

关于文库扩增适宜PCR循环数的选择,请参考ThruPLEX DNA-Seq Kit的操作说明书。

Q-12:没有Real Time PCR仪是否可以使用ThruPLEX DNA-Seq Kit?如果可以,如何确定PCR循环数?
A-12:

可以。ThruPLEX DNA-Seq Kit在没有Real Time PCR仪时也可以使用。适宜PCR循环数请参考ThruPLEX DNA-Seq Kit说明书,根据使用的DNA起始量进行选择。

Q-13:ThruPLEX DNA-Seq Kit制备的文库,如果浓度或收量不够的话是否可以追加扩增?
A-13:

可以。 ThruPLEX DNA-Seq文库,4℃最多保存6小时或-20℃最多保存7天后,不需要添加试剂可再进行追加扩增。关于文库处理流程,追加循环数的顺序及流程请参考ThruPLEX DNA-Seq Kit说明书。

Q-14:ThruPLEX DNA-Seq文库使用AMPure XP beads纯化后是否可以追加扩增?
A-14:

不可以

Q-15:ThruPLEX DNA-Seq Kit制备好的文库产量的预期是多少?
A-15:

预期产量为100 ng~1 μg。文库的产量随样品的种类、片段大小、使用的Thermal cycler等不同而不同。Covaris片段化后平均大小为200 bp的reference DNA,按照推荐的循环数扩增后,一般产量为300 ng~700 ng。

Q-16:AMPure XP纯化前后是否需要对ThruPLEX DNA-Seq文库进行定量?
A-16:

不需要。仅在测序前对单个或pooling之后的文库进行定量。文库扩增后,如果要进行文库定量需要增加AMPure XP纯化步骤,增加纯化操作可能会造成DNA损失,因此建议只对测序前的纯化文库进行定量。

Q-17:使用ThruPLEX DNA-Seq Kit制备的文库经AMPure XP纯化时,是否有需要特别注意的事项?
A-17:

是的。建议Beads:Sample比例为1:1。所有清洗步骤用到的80%乙醇需要现用现配。详细说明请参考ThruPLEX DNA-Seq Kit操作说明书。

Q-18:使用ThruPLEX DNA-Seq Kit制备的文库,测序时可以使用哪些Illumina平台?
A-18:

ThruPLEX DNA-Seq Kit制备的文库,适用于所有Illumina平台,包括HiSeq®, MiSeq®, NextSeq® 500, GAIIx, NovaSeq,和MiniSeq

Q-19:添加到Flow cell中的ThruPLEX DNA-Seq文库的浓度是多少?
A-19:

Flow cell中添加的样品浓度,请参照Illumina的推荐值。使用Illumina MiSeq® v3测序时,推荐添加14~15 pM的ThruPLEX DNA-Seq文库。

Q-20:ThruPLEX DNA-Seq文库添加到Flow cell中时,是否需要特殊的操作?
A-20:

不需要特殊的操作。ThruPLEX DNA-Seq文库的处理方法与TruSeq Nano DNA HT Sample Prep kit等Illumina文库制备试剂盒是相同的。

Q-21:添加到Flow cell前,是否需要在文库中加入PhiX?
A-21:

请参考Illumina公司的PhiX使用方法。对于多样性低的文库或者测序会遇到问题的文库,可能需要增加PhiX浓度。请参阅ThruPLEX DNA-Seq Kit说明书了解更多的测序建议。

页面更新:2020-04-15 15:14:48