本试剂盒适合于植物材料基因组DNA的提取。基因组DNA的提取量因材料不同而各异，一般情况下，从100 mg的植物材料中，可以提取约1～10 μg的基因组DNA。植物材料的DNA含量一般较低，尤其是含水分较多的植物果实及生长状况较老的叶片。幼嫩的植物叶苗及植物种子中基因组DNA含量相对丰富，且植物的DNA含量和植物的生长状态有很大关系，如果想要获得高品质的DNA请使用幼嫩的植物材料，否则可能得不到完整的DNA。
基因组DNA收量较低时，可以从以下几个方面考虑：
1．实验材料本身DNA含量低，比如从100 mg苹果果肉中仅能提取得到约几十纳克的基因组DNA；
2．液氮研磨不充分，DNA未充分释放。植物材料是需要进行液氮研磨的，所以充分的液氮研磨是获得高品质DNA的关键；
3．选材不当，处于生长中期或末期的植物材料DNA含量较低，甚至是不完整的DNA；
4．洗脱时将灭菌蒸馏水或Elution Buffer加热至65℃后使用将有利于提高洗脱效率；
5．请严格按照操作方法进行操作。
1．材料不够新鲜，收集后的材料未及时处理或未低温保存。我们建议材料应尽量在-80℃保存，运输过程中亦应使用干冰等。
2．材料本身有残留的DNA酶活性。可以增加一次Buffer WA的清洗操作。
3．如需长期保存提取的DNA，请使用Elution Buffer洗脱。
1．实验过程中没有使用RNase A。应严格按照实验操作要求使用RNase A。
2．RNase A可能失活。RNase A尽可能在-20℃下保存，RNase A活性比较稳定，一般不易失活。
1．提取的基因组DNA中盐份浓度过高。在使用Buffer WA和Buffer WB进行DNA制备膜的清洗时，请沿Spin Column的管壁四周加入，有助于彻底清洗掉Column上残留的盐离子，这样有利于提高清洗效果。
2．洗脱液中残留乙醇，在向Spin Column中加入洗脱液之前，将Spin Column在室温下静置2分钟有助于使Spin Column上残留的乙醇彻底挥发，然后再加入洗脱液洗脱。
3．进行DNA洗脱时请一定在膜的中央加入洗脱液，尽量不要沾染Spin Column的管壁四周。
页面更新：2020-04-29 14:44:36
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