一般情况下组织或细胞中所能提取的DNA量如下表：
| 组织材料 | 起始样品量 | 基因组DNA提取量 |
| 肝脏 | 100 mg | 300～400 μg |
| 肾脏 | 100 mg | 300～400 μg |
| 脑 | 100 mg | 200～300 μg |
| 心脏 | 100 mg | 200～300 μg |
| HL60培养细胞 | 1×107个 | 50～70 μg |
| 植物叶片 | 1 g | 20～200 μg |
| E.coli Cells | 1×109个 | 30～40 μg |
260 nm、320 nm、230 nm、280 nm下的吸光度分别代表了核酸、背景（溶液浑浊度）、盐浓度和蛋白质等有机物的吸光度值。OD260/OD280（R）体现了DNA中的蛋白质等有机物的污染程度，质量较好的DNA的R值应在1.8～2.0之间，当R<1.8时，溶液中的蛋白质等有机物的污染比较明显；当R>2.2时，说明DNA已经被水解成了单核苷酸。
在对核酸进行吸光度检测时，需要注意稀释液应使用TE Buffer。
DNA浓度＝（OD260-OD320）×稀释倍数×0.05 μg/μl。
可以参考如下建议进行改进：
1．向组织材料中加入DNAiso Reagent后，请充分研磨、匀浆，使其充分裂解。
2．组织材料中的DNA含量较少，提高起始材料使用量，本试剂不适用于微量组织材料DNA的提取。
3．增加DNAiso Reagent的添加量。
可以参考如下建议进行改进：
1．75%乙醇清洗沉淀后不要干燥时间过长或加热干燥。
2．基因组DNA在dH2O或TE Buffer中不易完全溶解，可以换成8 mM NaOH溶解。
3．当基因组DNA的量过大时不易溶解，可以加长溶解时间或轻轻摇动离心管以促进溶解。
可能的原因如下：
1．DNA应使用TE Buffer稀释后再进行吸光度值的测定，低离子强度或低pH值会使OD280值升高。
2．样品裂解时加入的DNAiso Reagent量偏少，造成蛋白质变性不充分，可以再次对DNA溶液进行苯酚/氯仿抽提，以除去蛋白质。
3．基因组DNA 未充分溶解。
提取的基因组DNA可能降解的原因如下：
1．使用的组织材料不够新鲜。提取基因组DNA的组织材料应采用新鲜的组织材料，或将新鲜的组织材料用液氮迅速冷冻后置于-80℃保存。
2．操作剧烈造成基因组DNA断裂，破坏了基因组DNA的完整性。
提取的基因组DNA中含有RNA污染，可能的原因如下：
1．组织材料或细胞裂解后未使用离心法除去RNA。
2．提取出的基因组DNA量较少时，采用离心法而未使用缠绕法收集基因组DNA沉淀，容易带来RNA污染。
3．如果提取的基因组DNA中含有RNA时，可以对提取的基因组DNA进行一次LiCl沉淀，以除去RNA污染，或者使用RNase进行处理。
页面更新：2020-04-28 16:02:23
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