| UDI? UMI? 快来围观宝藏主播找答案吧 |
| 相信有些小伙伴已经隐隐约约有听说过UDI和UMI这两个英文缩写，但是一直没搞清楚它们全名是啥？它们能干啥？ 为了帮助小伙伴们厘清这两个概念，我们特别企划制作了一期科普趣味视频，从含义到应用场景对这两个概念作一个完整的阐述。 同时，为了感谢小伙伴们一直以来对我们的支持，我们在视频中给大家准备了精美小礼品，一定要看视频才能领取哦！ 现在有请我们的“宝藏主播”↓ |
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| 对于不方便看视频的小伙伴，我们贴心地将精华内容整理如下↓ |
| 在正文开始前，我们先来“揭秘”UDI和UMI的全称： UDI的全称为Unique Dual Index，译为双端唯一标签技术。 UMI的全称为Unique Molecular Identifier，译为分子条形码或者分子标签技术。 别急，要弄清这两个概念，还得从二代测序的那些事情说起： 我们都知道二代测序技术是近十年来曝光率非常高、非常受关注的基因组分析技术。以Illumina为代表的测序仪厂商不断推出更新型号的测序仪，不断刷新测序通量，但不变的仍是多样本混合后测序的策略。 要实现对多个样本同时测序，必须在各样本PCR扩增阶段，往DNA片段上添加一段分子序列作为样本标签，这种标签叫做index。 |
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| 这样，每个样本就带上属于它的“专属号码牌”，在多样本混合测序后，生信工程师能通过“翻牌”，确定这个“号码”所代表的就是“寻寻觅觅”的那个“它”。 |
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| Index一般由8位碱基所组成，常有单端与双端两种添加模式，为了增加同时上样的通量，大家一般在面临大量样本同时测序时，会选择双端index↓ |
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| 目前常用的双端index策略是通过少数几种index序列排列组合，去实现更多样本的标签区分（如96种），但这种方式一直存在交叉污染的可能。 |
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| 同时，为了进一步提升通量与扩增效率，降低测序成本，Illumina为Novaseq等高通量型测序仪引入了图案化流动槽（Patterned Flow Cell Technology，PFCT）和排他性扩增（Exclusion Amplification，ExAmp）成簇技术。这两个看似美好的技术却无意间放大了一种叫做标签跳跃（index hopping）的样本标签错配的现象，导致科研人员无法正确拆析样本与数据的关系，最终可能与重大发现“失之交臂”。 |
| 为了降低标签跳跃，Illumina在白皮书[1]中提到可以使用UDI双端特殊标签对样本进行标记，混样后进行测序。 |
| UDI的引入使得文库两端的index序列是唯一，且一对一组合的，不存在共用。换句话说，只有两端带有完全正确index序列的reads才能进入后续的样本分析，从而可以剔除标签错配的reads，有效避免样本之间的数据串扰。 |
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| 一句话总结：采用UDI策略，能更正确拆解测序数据与样本之间的一一对应关系，减小样本“戴错号码牌”的概率。 |
| 下面再来讲讲名为分子标签技术的UMI： |
| UMI的原理就是给每一条原始DNA片段加上一段特有的标签序列，经PCR扩增后一起进行测序。这样根据不同的标签序列，生信人员就能区分不同来源的DNA模板，分辨哪些是PCR扩增及测序过程中的随机错误造成的假阳性突变，哪些是患者真正携带的突变，从而提高检测灵敏度和特异性。 |
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| 一些需要较高正确度的应用，如肿瘤稀有突变分析，常会对5%、甚至1%左右的稀有变异作检测。这时一旦出现测序错误、或者PCR偏差，便会产生大量假阳性结果，因此需要添加UMI进行校正。 |
| 一句话总结：做稀有突变检测、校正测序错误与PCR偏差，UMI“劳苦功高”。 |
| 看到这里，关于UDI和UMI的介绍已基本完成。 |
| 接下来我们来看一个实际案例应用。 |
| 最近我们收到一位宝粉的来信，咨询我们Takara有没有什么好的文库构建方案↓ |
| 从email中我们了解到这位宝粉的团队 ① 最近正在研发肿瘤稀有突变分析的项目； ② 样本类型主要是FFPE(石蜡包埋样本)、cfDNA（游离DNA）； ③ 起始量大概在几十ng；④准备自己建库，然后送样测序，平台是Novaseq； ⑤ 由于是刚接触建库实验，不希望操作太复杂。 我思考了大概1秒钟，就从我们丰富的DNA-Seq文库构建产品线中找到了一款合适的产品↓ |
| ThruPLEX Tag-Seq HV |
| 为什么说这款产品合适呢？我们来对标这位宝粉的几个需求。 |
| 需求1：希望操作简便，不要太繁琐 |
| 对标1：ThruPLEX Tag-Seq HV这款试剂盒支持单管、三步操作，手动15 min，全程2 h，无需在建库过程中转管或纯化。 |
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| 我们比较了ThruPLEX HV和K、N两家公司的试剂盒，只有ThruPLEX是单管操作、时间最短、操作最便捷的系统。 |
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| 所以，无论新手还是老手，都能很快上手！ |
| 需求2：样本类型为FFPE DNA、cfDNA，起始量大概在几十ng |
| 对标2：ThruPLEX Tag-Seq HV支持5-200 ng FFPE DNA、cfDNA起始，input volume为30μl，无需样品浓缩。 |
| 需求3：Novaseq测序分析稀有变异 |
| 对标3：ThruPLEX Tag-Seq HV搭配UDI建库，可以有效降低index hopping效应，是高通量型Illumina测序仪的“友好伙伴” |
| ThruPLEX Tag-Seq HV茎环形接头上还包含7位碱基的固定型UMI，双端总共可有144种UMI连接到DNA分子两端，以识别一致序列，减少扩增或者测序错误带来的假阳性突变。 |
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| 再举几个例子 |
| Takara科学家采用ThruPLEX Tag-Seq HV对10 ng起始的Quan-Plex Patient-Like ctDNA标准品（AccuRef）构建文库，肿瘤相关的基因采用IDT xGEN Pan Cancer Panel进行捕获富集，随后用UMIs鉴定了ctDNA标准品中特定位点的实际突变频率。结果显示，检测到的突变频率分别与预期1%、5%的等位突变频率接近，而阴性对照组没有在位点处检测到任何突变。 |
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| 同时，为了比较UMI与常规使用的坐标法之间的效果差异，Takara科学家先使用未去重或者仅用坐标法去重的文件分析，在预期的EGFR L858R突变附近观察到大量的低频及随机等位基因频率突变。而随后用UMI校正、过滤数据后，清除了假阳性突变，得到了预期的突变分析结果！ |
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| 经过几场对标，我们明确了ThruPLEX Tag-Seq HV能满足那位宝粉开发cfDNA/FFPE DNA稀有突变项目的需求。 |
| 当然，若小伙伴们也有同等需求，ThruPLEX Tag-Seq HV定能不负所望。 |
| 重要的事情再说一次：看过视频才能获得奖品领取指南哟！ |
| 参考文献： |
| [1] Illumina.Effects of index misassignment on multiplexing and downstream Analysis(white paper). 4(2017). |
| 了解详细信息请点击：ThruPLEX Tag-Seq HV |
页面更新：2020-06-29 10:08:25
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