本制品是DNA回收专用试剂，不能进行RNA回收。
能用于冷冻切片的回收，但脱完蜡的切片的DNA提取尚未进行实验确认。
把固定于载玻片上的组织从载玻片上刮离、或者用二甲苯进行剥离后，将无法回收DNA。此时可以使用限定部位法（参考说明书中的“操作方法”Ⅱ）进行DNA回收。但是经染色后的组织材料，其染色剂对PCR反应有阻碍作用，应十分注意。
DEXPAT不是核酸纯化试剂，是DNA的回收试剂，因此不建议用UV分光光度计进行DNA定量。
因回收DNA量少，往往不能用电泳进行确认。
通常可以回收200 μl以上的水层溶液。
可能是使用的切片过大，请从以下几方面加以考虑。
① 减少切片量。
② 提高离心转速。（使用离心机的最大转速进行离心。）
③ 加热时进行搅拌，使TaKaRa DEXPAT Easy很好混合。
④ 离心时如不十分冷却，10分钟离心将无法得到固化的石蜡薄膜，此时请延长离心时间或减少样品加量。
① 可能混有PCR扩增的抑制剂。请尝试使用抗阻害性强的MightyAmp DNA Polymerase Ver.2 (Code No. R071A/B)、MightyAmp DNA Polymerase Ver.3 (Code No. R076A/B)或 PrimeSTAR GXL DNA Polymerase（Code No. R050A/B）进行PCR反应。使用PrimeSTAR GXL时，DNA溶液加入量不要超过PCR反应体积的1/10（V/V）量。使用MightyAmp DNA Polymerase时，DNA溶液加入量不要超过PCR反应体积的4/10（V/V）量。
② 目的基因表达量低或者由于包埋、固定的处理使DNA损伤比较严重。这种情况推荐增加DNA溶液加入量，使用MightyAmp DNA Polymerase进行扩增。
NOTE：使用TaKaRa Ex Taq等普通PCR聚合酶时，DNA溶液加入量不能超过PCR反应总体积的1/10。通过乙醇沉淀进行纯化的DNA可除去抑制剂，提高DNA有效模板量。使用MightyAmp DNA Polymerase进行PCR反应时，DNA的加入量为PCR反应总体积的4/10，也可得到良好的扩增。一般情况下，使用普通PCR聚合酶进行扩增时，请对DNA溶液进行乙醇沉淀后再进行PCR反应。
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