可以参考以下建议进行改善：
1．由于植物组织的不同，基因组DNA回收量会有所不同，请增加初始组织量。
2．松、山茶等固体叶片可以使用液氮研磨后再提取基因组DNA。
3．使用Microtube用研磨棒代替Pipet Tip进行按压处理可能会提高收量。
4．添加异丙醇或者70％乙醇后的离心时间延长（添加异丙醇后的离心时间10分钟→30分钟、添加70％乙醇后的离心时间3分钟→30分钟等），可能会提高收量。
5．根据植物组织的保存时间、保存条件的不同，基因组DNA收量会有所不同，请尽量使用新鲜样品。
可以参考以下建议进行改善：
1．有时回收的基因组DNA溶液中含有PCR反应的阻害物质，请将基因组DNA溶液进行稀释后再作为PCR反应的模板使用。
2．初始组织量太多，请减少初始组织量。
3．基因组DNA溶液呈茶褐色时，可能混入了明胶类物质，使用High-Salt Solution for Precipitation（Plant）（Code No. 9193）处理可能将缓和对PCR反应的阻害。使用High-Salt Solution for Precipitation（Plant）处理基因组DNA样品时，操作方法与处理RNA样品相同。但是不含PCR反应阻害物质的样品如果使用High-Salt Solution for Precipitation（Plant）处理后，相反有可能会引起对PCR反应的阻害，请注意！
4．PCR反应用酶选择TaKaRa Ex Taq® Hot Start Version（Code No. RR006）。
使用本产品时，有可能存在RNA污染，此时推荐使用RNase处理。
RNase处理方法：
1、向DNA溶液中加入终浓度为10-20 μg/ml的RNase A*
2、37℃保温30分钟
3、如有必要，可用酚/氯仿抽提。
*：RNase A粉末需用10 mM Tris-HCl pH7.5和15 mM NaCl配置成1 mg/ml的溶液。若含有DNase，100℃加热15分钟使DNase失活（无DNase的RNase A溶液可购买）。
页面更新：2020-04-29 15:17:35
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